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Product details

非洲豬瘟病毒熒光PCR檢測試劑盒

批準文號:獸藥生字191538869

檢測方法:熒光PCR

產(chǎn)品規(guī)格:50份/盒

保存條件:A盒室溫,B盒-20℃以下保存




  • 產(chǎn)品介紹

    【獸藥名稱非洲豬瘟病毒熒光PCR檢測試劑盒

    【主要成分與含量】

    組分

    數(shù)量

    消化液

    1瓶(11ml

    DNA結(jié)合液

    1瓶(11ml)

    DNA洗滌液

    1瓶(52ml)

    DNA洗脫液

    1瓶(4ml)

    蛋白酶K

    1管(1.1ml)

    無菌無核酸酶水

    1管(600μl)

    PCR擴增反應(yīng)液

    1管(600μl)

    實時熒光混合液

    1管(155μl

    陽性對照

    1管(600μl)

    陰性對照

    1管(600μl)

    DNA吸附柱和收集管

    1袋(50套)

    【作用與用途】用于豬全血、血清、脾臟、淋巴結(jié)、肌肉等組織樣品及糞便樣品中非洲豬瘟病毒DNA的檢測。

    【用法與判定】

    1  用法

    1.1  樣品采集、保存及運輸

    1.1.1  樣品采集

    1.1.1.1  活豬樣品  無菌采集EDTA抗凝血,或采血后按常規(guī)方法分離血清。

    1.1.1.2  病死豬或屠宰豬樣品  無菌采集脾臟、淋巴結(jié)、肌肉等組織樣品。

    1.1.1.3  病豬所處環(huán)境樣品  采集糞便樣品。

    1.1.2  樣品保存  所有待檢樣品在2~8℃保存應(yīng)不超過24小時;在-20℃保存應(yīng)不超過6個月;長期保存時,以-70℃以下為宜。

    1.1.3  樣品運輸  樣品一定要放置在有干冰或冰塊的冷藏包中,保持全程冷鏈運輸。要求在運輸至實驗室時,干冰仍覆蓋標(biāo)本或冰塊仍未完全融化。

    1.2  樣品處理

    1.2.1  抗凝血和血清處理  取抗凝血或血清200μl,置1.5ml滅菌離心管中。

    1.2.2  組織樣品處理  分別從待檢組織三個不同的部位稱取樣品約1g,用手術(shù)剪剪碎混勻,再取0.05g于研磨器中研磨,加入1.5ml生理鹽水繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至1.5ml滅菌離心管中,8000r/min離心2分鐘,取上清液200μl,置1.5ml滅菌離心管中。

    1.2.3  糞便樣品處理  取0.3g樣品于研磨器中研磨,加入1.5ml生理鹽水繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至1.5ml滅菌離心管中,8000r/min離心2分鐘,取上清液200μl,置1.5ml滅菌離心管中。

    1.2.4  陽性對照處理  取陽性對照200μl,置1.5ml滅菌離心管中。

    1.2.5  陰性對照處理  取陰性對照200μl,置1.5ml滅菌離心管中。

    1.3  病毒DNA的提取

    1.3.1  取已處理的樣品、陰性對照和陽性對照,分別加入200μl消化液和20μl蛋白酶K,振蕩混勻后,置56℃水浴中消化,每5分鐘渦旋振蕩一次,共消化15分鐘。

    1.3.2  從水浴鍋中取出樣品管,降至室溫后,加入200μl DNA結(jié)合液,顛倒混勻,將全部液體移入吸附柱中(吸附柱要套上收集管,吸取液體時盡量不要吸到懸浮雜質(zhì),以免離心時堵塞吸附柱),室溫靜置3分鐘,10000r/min離心30秒。

    1.3.3  棄去收集管中液體,加入500μl DNA洗滌液,10000r/min離心30秒。

    1.3.4  重復(fù)步驟1.3.3。

    1.3.5  棄去收集管中液體,10000r/min空柱離心1分鐘,以除去殘留的DNA洗滌液。

    1.3.6  將吸附柱放入新的1.5ml離心管中,向柱中央加入DNA洗脫液50μl,室溫放置2分鐘,10000r/min離心30秒,離心管中液體即為模板DNA。

    1.4  實時熒光PCR操作

    1.4.1  反應(yīng)體系配制  設(shè)被檢樣品、陰性對照和陽性對照的份數(shù)總和為N,按如下反應(yīng)體系配制:  

                                         無菌無核酸酶水

                                          6.4×(N+1)μl

                                         PCR擴增反應(yīng)液

                                          10×(N+1)μl

                                         實時熒光混合液

                                          2.6×(N+1)μl

                                                 合計

                                          19×(N+1)μl

            將以上配制的反應(yīng)體系充分混勻后,分裝至每個反應(yīng)管中各19μl。分別取1.3.6中DNA 1μl,加入相應(yīng)反應(yīng)管中,蓋緊管蓋后5000r/min離心30秒。

    1.4.2  擴增  將反應(yīng)管放入熒光PCR儀內(nèi),記錄樣本擺放順序。反應(yīng)參數(shù)為95℃預(yù)變性2分鐘;95℃變性5秒,58℃退火延伸15秒,共40個循環(huán),熒光收集設(shè)置在每次循環(huán)的退火延伸結(jié)束時進行(報告基團“FAM”,淬滅基團“NONE”)。

    2  判定

    2.1  結(jié)果分析條件設(shè)定  閾值設(shè)定原則:閾值線超過陰性對照擴增曲線的最高點,且相交于陽性對照擴增曲線進入指數(shù)增長期的拐點,或根據(jù)儀器噪聲情況進行調(diào)整。每個樣品反應(yīng)管內(nèi)的熒光信號到達設(shè)定的閾值時所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)即為Ct值。

    2.2  結(jié)果成立條件  陽性對照Ct值<30并出現(xiàn)特異的擴增曲線,陰性對照無Ct值且無特異的擴增曲線,試驗結(jié)果成立。

    2.3  結(jié)果判定

    2.3.1  被檢樣品Ct值≤35并出現(xiàn)特異的擴增曲線,判為非洲豬瘟病毒核酸陽性。

    2.3.2  被檢樣品無Ct值或Ct值≥40且無特異的擴增曲線,判為非洲豬瘟病毒核酸陰性。

    2.3.3  被檢樣品35<Ct值<40并出現(xiàn)特異的擴增曲線,判為非洲豬瘟病毒核酸疑似,對疑似樣品,需重新取樣提取DNA,按雙倍模板量(即2μl DNA)進行復(fù)檢,Ct值<40并出現(xiàn)特異的擴增曲線判為陽性,否則判為陰性。

    【注意事項】  

    (1)所有試劑應(yīng)在規(guī)定的溫度下保存。

    (2)實驗室應(yīng)分配液區(qū)、模板提取區(qū)和擴增區(qū)。工作流程順序為配液區(qū)→模板提取區(qū)→擴增區(qū)。各區(qū)器材試劑專用,不可跨區(qū)使用。實驗結(jié)束后立即用1%次氯酸鈉或75%酒精或紫外燈消毒工作臺。

    (3)PCR擴增反應(yīng)液應(yīng)置于冰盒上使用,其余冷凍保存的試劑使用前應(yīng)室溫融化,再8000r/min離心15秒,使液體全部沉于管底。用畢所有試劑立即放回原處。

    (4)離心管、吸頭等在實驗前應(yīng)全部高壓滅菌。用滅菌的鑷子夾取離心管,打開和蓋上離心管蓋時避免手和手套接觸離心管口,若離心管開蓋時有液體粘在手上或濺出,應(yīng)立即更換手套。

    (5)提取的樣品,短期內(nèi)使用放置于2~8℃或冰上,長期應(yīng)在-70℃以下保存,但仍以新鮮提取的樣品效果最好。

    (6)反應(yīng)體系在特定配液區(qū)配制,配制和分裝反應(yīng)體系時應(yīng)盡量避免產(chǎn)生氣泡,上機前,5000r/min離心30秒,檢查各反應(yīng)管是否蓋緊,以免熒光物質(zhì)泄露污染儀器,整個實驗過程應(yīng)嚴格控制污染。

    (7)嚴格遵守操作說明可以獲得最好的結(jié)果。操作過程中移液、定時、轉(zhuǎn)速等全部參數(shù)必須精確。

    (8)注意防止試劑盒組分受污染。不要使用超過有效期限的試劑,不同批次試劑盒之間的組分不要混用。

    (9)所有用于檢測的廢棄物品均應(yīng)放入含消毒液的廢物缸內(nèi),高壓滅菌處理。

    【規(guī)格】50份/盒

    【批準文號獸藥生字191538869