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【獸藥名稱】非洲豬瘟病毒熒光PCR檢測試劑盒

【主要成分與含量】

【作用與用途】用于豬全血、血清、脾臟、淋巴結、肌肉等組織樣品及糞便樣品中非洲豬瘟病毒DNA的檢測。

【用法與判定】

1  用法

1.1  樣品采集、保存及運輸

1.1.1  樣品采集

1.1.1.1  活豬樣品  無菌采集EDTA抗凝血，或采血后按常規(guī)方法分離血清。

1.1.1.2  病死豬或屠宰豬樣品  無菌采集脾臟、淋巴結、肌肉等組織樣品。

1.1.1.3  病豬所處環(huán)境樣品  采集糞便樣品。

1.1.2  樣品保存  所有待檢樣品在2～8℃保存應不超過24小時；在-20℃保存應不超過6個月；長期保存時，以-70℃以下為宜。

1.1.3  樣品運輸  樣品一定要放置在有干冰或冰塊的冷藏包中，保持全程冷鏈運輸。要求在運輸至實驗室時，干冰仍覆蓋標本或冰塊仍未完全融化。

1.2  樣品處理

1.2.1  抗凝血和血清處理  取抗凝血或血清200μl，置1.5ml滅菌離心管中。

1.2.2  組織樣品處理  分別從待檢組織三個不同的部位稱取樣品約1g，用手術剪剪碎混勻，再取0.05g于研磨器中研磨，加入1.5ml生理鹽水繼續(xù)研磨，待勻漿后轉至1.5ml滅菌離心管中，8000r/min離心2分鐘，取上清液200μl，置1.5ml滅菌離心管中。

1.2.3  糞便樣品處理  取0.3g樣品于研磨器中研磨，加入1.5ml生理鹽水繼續(xù)研磨，待勻漿后轉至1.5ml滅菌離心管中，8000r/min離心2分鐘，取上清液200μl，置1.5ml滅菌離心管中。

1.2.4  陽性對照處理  取陽性對照200μl，置1.5ml滅菌離心管中。

1.2.5  陰性對照處理  取陰性對照200μl，置1.5ml滅菌離心管中。

1.3  病毒DNA的提取

1.3.1  取已處理的樣品、陰性對照和陽性對照，分別加入200μl消化液和20μl蛋白酶K，振蕩混勻后，置56℃水浴中消化，每5分鐘渦旋振蕩一次，共消化15分鐘。

1.3.2  從水浴鍋中取出樣品管，降至室溫后，加入200μl DNA結合液，顛倒混勻，將全部液體移入吸附柱中（吸附柱要套上收集管，吸取液體時盡量不要吸到懸浮雜質(zhì)，以免離心時堵塞吸附柱），室溫靜置3分鐘，10000r/min離心30秒。

1.3.3  棄去收集管中液體，加入500μl DNA洗滌液，10000r/min離心30秒。

1.3.4  重復步驟1.3.3。

1.3.5  棄去收集管中液體，10000r/min空柱離心1分鐘，以除去殘留的DNA洗滌液。

1.3.6  將吸附柱放入新的1.5ml離心管中，向柱中央加入DNA洗脫液50μl，室溫放置2分鐘，10000r/min離心30秒，離心管中液體即為模板DNA。

1.4  實時熒光PCR操作

1.4.1  反應體系配制  設被檢樣品、陰性對照和陽性對照的份數(shù)總和為N，按如下反應體系配制：  

        將以上配制的反應體系充分混勻后，分裝至每個反應管中各19μl。分別取1.3.6中DNA 1μl，加入相應反應管中，蓋緊管蓋后5000r/min離心30秒。

1.4.2  擴增  將反應管放入熒光PCR儀內(nèi)，記錄樣本擺放順序。反應參數(shù)為95℃預變性2分鐘；95℃變性5秒，58℃退火延伸15秒，共40個循環(huán)，熒光收集設置在每次循環(huán)的退火延伸結束時進行（報告基團“FAM”，淬滅基團“NONE”）。

2  判定

2.1  結果分析條件設定  閾值設定原則：閾值線超過陰性對照擴增曲線的最高點，且相交于陽性對照擴增曲線進入指數(shù)增長期的拐點，或根據(jù)儀器噪聲情況進行調(diào)整。每個樣品反應管內(nèi)的熒光信號到達設定的閾值時所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)即為Ct值。

2.2  結果成立條件  陽性對照Ct值＜30并出現(xiàn)特異的擴增曲線，陰性對照無Ct值且無特異的擴增曲線，試驗結果成立。

2.3  結果判定

2.3.1  被檢樣品Ct值≤35并出現(xiàn)特異的擴增曲線，判為非洲豬瘟病毒核酸陽性。

2.3.2  被檢樣品無Ct值或Ct值≥40且無特異的擴增曲線，判為非洲豬瘟病毒核酸陰性。

2.3.3  被檢樣品35＜Ct值＜40并出現(xiàn)特異的擴增曲線，判為非洲豬瘟病毒核酸疑似，對疑似樣品，需重新取樣提取DNA，按雙倍模板量（即2μl DNA）進行復檢，Ct值＜40并出現(xiàn)特異的擴增曲線判為陽性，否則判為陰性。

【注意事項】  

（1）所有試劑應在規(guī)定的溫度下保存。

（2）實驗室應分配液區(qū)、模板提取區(qū)和擴增區(qū)。工作流程順序為配液區(qū)→模板提取區(qū)→擴增區(qū)。各區(qū)器材試劑專用，不可跨區(qū)使用。實驗結束后立即用1%次氯酸鈉或75%酒精或紫外燈消毒工作臺。

（3）PCR擴增反應液應置于冰盒上使用，其余冷凍保存的試劑使用前應室溫融化，再8000r/min離心15秒，使液體全部沉于管底。用畢所有試劑立即放回原處。

（4）離心管、吸頭等在實驗前應全部高壓滅菌。用滅菌的鑷子夾取離心管，打開和蓋上離心管蓋時避免手和手套接觸離心管口，若離心管開蓋時有液體粘在手上或濺出，應立即更換手套。

（5）提取的樣品，短期內(nèi)使用放置于2～8℃或冰上，長期應在-70℃以下保存，但仍以新鮮提取的樣品效果最好。

（6）反應體系在特定配液區(qū)配制，配制和分裝反應體系時應盡量避免產(chǎn)生氣泡，上機前，5000r/min離心30秒，檢查各反應管是否蓋緊，以免熒光物質(zhì)泄露污染儀器，整個實驗過程應嚴格控制污染。

（7）嚴格遵守操作說明可以獲得最好的結果。操作過程中移液、定時、轉速等全部參數(shù)必須精確。

（8）注意防止試劑盒組分受污染。不要使用超過有效期限的試劑，不同批次試劑盒之間的組分不要混用。

（9）所有用于檢測的廢棄物品均應放入含消毒液的廢物缸內(nèi)，高壓滅菌處理。

【規(guī)格】50份/盒

【批準文號】獸藥生字191538869